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Carrière et étude

Emplois et stages

Vous souhaitez contribuer à l’avancement de la recherche ? Joignez-vous à l’une de nos équipes. Voici la liste des emplois et stages à combler au Centre de recherche de l'Hôpital Maisonneuve-Rosemont (CR-HMR). Si aucun poste ne correspond à ce que vous cherchez, n’hésitez pas à envoyer une candidature spontanée directement aux chercheurs dont les travaux vous intéressent.

Available Positions and Interships

Offres d'emploi et de stage

Recherche clinique

Infirmier(ière) en recherche clinique - Greffe de cellules souches hématopoïétique

Poste

  • Poste à temps complet 
  • Salaire selon les qualifications 
  • Non-syndiqué

Direction 

Recherche clinique 

Sommaire du poste

Sous l’autorité du Dr. Jean Roy, et sous la supervision du gestionnaire de l’unité de recherche clinique Mr. Hocine Ait Hamouda, l’infirmier(ière) de recherche clinique travaillera dans l’unité de recherche en greffe de cellules souches hématopoïétiques. En collaboration avec les hématologues greffeurs et les membres de l’unité de recherche clinique, cet(te) infirmier(ière) de recherche participera à divers niveaux à des études provenant de chercheurs locaux et de l’industrie pharmaceutique.

La personne qui comblera ce poste sera responsable du recrutement, du suivi et des soins des participants afin d’assurer la sécurité de ceux-ci tout en respectant les exigences des protocoles de recherche, les procédures de l’hôpital et les bonnes pratiques cliniques. Elle sera également impliquée dans la collecte de données en lien avec les projets de recherche.

Date limite

3 avril 2020

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Infirmier(ière) en recherche clinique - Hémato-oncologie

Poste

  • Poste à temps complet 
  • Salaire selon les qualifications 
  • Non-syndiqué

Direction 

Direction de la recherche

Sommaire du poste

Sous l’autorité du Dre Luigina Mollica, l’infirmier(ière) de recherche clinique travaillera dans l’unité de recherche en néoplasies myéloprolifératives (NMP), lymphomes et leucémies. En collaboration avec les hémato-oncologues et les membres de l’unité de recherche clinique, cet(te) infirmier(ière) de recherche participera à divers niveaux à des études provenant de chercheurs locaux et de l’industrie pharmaceutique.

La personne qui comblera ce poste sera responsable du recrutement, du suivi et des soins des participants afin d’assurer la sécurité de ceux-ci tout en respectant les exigences des protocoles de recherche, les procédures de l’hôpital et les bonnes pratiques cliniques. Elle sera également impliquée dans la collecte de données en lien avec les projets de recherche.

Date limite

17 janvier 2020

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Assistant(e) en recherche clinique - Hémato-oncologie

Poste

  • Poste à temps complet 
  • Salaire selon les qualifications 
  • Non-syndiqué

Direction 

Direction de la recherche

Sommaire du poste

Sous l’autorité du Dre Luigina Mollica, l’assistant de recherche clinique travaillera dans l’unité de recherche en néoplasies myéloprolifératives (NMP), lymphomes et leucémies. En collaboration avec les hémato-oncologues et les membres de l’unité de recherche, cette personne participera à divers niveaux à la faisabilité, la mise en place, la tenue d’études cliniques en hématooncologie provenant de l’industrie pharmaceutique et de chercheurs locaux.

Cette personne pourrait jouer un rôle dans des projets de banques de données/matériel biologique. Son travail et ses activités doivent être réalisés en respectant les exigences des protocoles de recherche, les procédures de l’hôpital, les bonnes pratiques cliniques et la réglementation applicable.

Date limite

17 janvier 2020

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Post-doctorat

Stage de post-doctorat en angiogénèse choroïdienne et rétinienne

Sommaire du poste

Our laboratory focuses on characterizing novel molecules that modulate the growth of blood vessels in the eye, with the hope of establishing new therapeutic strategies to treat neovascular ocular pathologies. Indeed, diseases associated with inappropriate neovascularization, such as age-related macular degeneration (AMD), account for the most common causes of vision loss in the industrial world. AMD is characterized by choroidal blood vessel growth that can ultimately lead to retinal damage. Our lab tackles these diseases by studying choroidal and retinal angiogenesis and the factors that regulate it. Moreover, we are interested in the cellular interactions and signaling that regulate vessel growth in both physiological and pathological contexts.

Date d'affichage

Juin 2019

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Stage de post-doctorat : Coordination de la traduction de l’ARN et du métabolisme dans la résistance aux thérapies ciblées dans le cancer

Sommaire du poste

The research project aims to decipher the cross-talk between gene expression (mRNA translation) and metabolic reprogramming in cancer, and in adaptation to stress, by exploiting a combination of systems biology approaches (i.e. metabolomics, transcriptomics, and translatomics [transcriptome-wide collection of actively translated mRNAs]), combined with rigorous validation using standard molecular and cellular biology techniques.

More particularly, this project aims to dissect the mechanisms underpinning the anti-cancer action of translational inhibitors (against eIF4A and eIF4G) in the context of kinase inhibitor resistance, with the long-term goal of improving kinase inhibitor efficacy in the clinic.

Date d'affichage

Novembre 2019

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Doctorat

Stage de doctorat en division asymétrie et biophotonique

Poste

  • Temps complet

Service

Direction de la recherche

Sommaire du poste

We are looking for a motivated M.Sc. or Ph. D. student with background in molecular biology,
biomedical sciences or biomedical engineering interested to work on asymmetric division.
We recently developed a technology to labelling the membrane of live cell, a method termed Cell
Labeling via Photobleaching (CLaP). It allows arbitrary tagging of individual cells among a
heterogeneous population within a microscopy field. CLaP consists of crosslinking biotin to the
plasma membrane of chosen cells with the lasers of a confocal microscope, followed by use of
fluorescent streptavidin conjugates to reveal the tagged cells. In this manner, the same
instrument used for imaging can be adapted to label particular cells based exclusively on any
visible trait that distinguishes them from the ensemble. The mark is stable, non-toxic, retained in
cells for several days, and does not produce detectable alterations in cell morphology, viability,
or proliferative capacity. Moreover, genome-wide transcriptomic profiling demonstrated no
major changes in gene expression associated with the procedure. We aim to apply this method
to study genetic mechanism governing asymmetric division.

Date d'affichage

Mai 2019

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Stage de doctorat en OCT et biophotonique

Poste

  • Temps complet

Service

Direction de la recherche

Sommaire du poste

During radiotherapy, ionizing radiation (IR) efficiently kills cancer cells by directly inducing highlygenotoxic DNA double strand breaks (DSB). The efficiencies of DSB are critical determinants in the response to cancer radiotherapy; indeed substantial evidence indicates that enhanced DSBR capacity in individual patients is a major determinant in tumour radioresistance. Moreover, (i) the considerable number of patients displaying severe radiosensitivity, who suffer from extreme IR-induced destruction of healthy tissue, and (ii) the occurrence of radiotherapy-induced secondary cancers, are both presumably associated with reduced DSBR capacity. In view of the above, there is a pressing need to better understand the fundamental mechanisms of DSBR, towards improving the clinical management of patients undergoing radiotherapy. Following exposure of cells to IR, multiple DNA repair proteins are rapidly recruited to DSB sites, forming nuclear foci which can only be monitored visually by fluorescence microscopy. Importantly, abnormal persistence (slow resolution) of foci is a well-established indicator of defective DSBR in general. Isolation and subsequent characterization of single cells based on their ability to resolve IRinduced nuclear foci has never been accomplished. To address this, we recently developed a method termed Single-Cell Magneto-Optical Capture (scMOCa) that allows, for the first time, arbitrary tagging of individual cells among a heterogeneous population within a microscopy field and their subsequent isolation and clonal expansion. By targeting individual live cells from within a heterogeneous population exhibiting differential capacity to resolve IR-induced DNA repair foci, we will set the stage for genome-wide profiling and functional analyses on the resulting clonallyderived cell populations.

Date d'affichage

Mai 2019

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Stage de doctorat en réparation double-brin et biophotonique

Poste

  • Temps complet

Service

Direction de la recherche

Sommaire du poste

We are looking for a motivated M.Sc. or Ph. D. student with background in molecular biology,
biomedical sciences or biomedical engineering interested to work on asymmetric division.
We recently developed a technology to labelling the membrane of live cell, a method termed Cell
Labeling via Photobleaching (CLaP). It allows arbitrary tagging of individual cells among a
heterogeneous population within a microscopy field. CLaP consists of crosslinking biotin to the
plasma membrane of chosen cells with the lasers of a confocal microscope, followed by use of
fluorescent streptavidin conjugates to reveal the tagged cells. In this manner, the same
instrument used for imaging can be adapted to label particular cells based exclusively on any
visible trait that distinguishes them from the ensemble. The mark is stable, non-toxic, retained in
cells for several days, and does not produce detectable alterations in cell morphology, viability,
or proliferative capacity. Moreover, genome-wide transcriptomic profiling demonstrated no
major changes in gene expression associated with the procedure. We aim to apply this method
to study genetic mechanism governing asymmetric division.

Date d'affichage

Mai 2019

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Stage de doctorat : voies de signalisation des cellules T et immunothérapie du cancer

Poste

  • Temps complet

Service

Direction de la recherche

Sommaire du poste

Nous cherchons à recruter étudiant diplômé à étudier pour une M.Sc. ou doctorat dans notre groupe d'immunologie dirigé par le Dr Christopher Rudd du CR de l’Hôpital Maisonneuve- Rosemont, un centre de recherche affilié à l'Université de Montréal. Le projet impliquera d'étudier les voies de signalisation des cellules T influençant les réponses des cellules T au cancer et à l'infection. Les projets comprennent une analyse de la fonction de différents co-récepteurs tels que CD28, PD-1, CTLA-4 dans la modulation de la fonction des cellules T et de l'immunité anti-tumorale. Un accent particulier est mis sur la nature des événements de signalisation des cellules T qui conduisent à une meilleure immunothérapie. Notre laboratoire fait partie d'un groupe solide de chercheurs collaborateurs ayant une expertise dans la biologie des lymphocytes T et du cancer, oeuvrant au sein d’un centre de recherche interdisciplinaire. Nous utilisons diverses techniques de biologie cellulaire et moléculaire dont la microscopie multi-photons sur des modèles murins afin d’étudier les maladies chez la souris et chez l’homme.

Date d'affichage

Mai 2019

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Stage de doctorat : développement d'approche combinatoire en biomatériaux, nanophotonique et neuro-immunologie

Poste

  • Temps complet

Service

Direction de la recherche

Sommaire du poste

Candidat(e) au doctorat recherché(e) pour une thèse portant sur le développement d'approche combinatoire en biomatériaux, nanophotonique et neuro-immunologie afin de développer des molécules anti-inflammatoires de nouvelle génération.

Briefly, neurological pain and inflammation are involved in many pathological conditions for which treatment faces clinical challenges. Here, we will be using nanophotonics-enabled drug delivery to effectively modulate inflammation and relieve pain in several disease models, including severe viral infection. Our approach uses a combination of biomedical engineering, nanotechnology, molecular and cell biology techniques to enable targeted drug delivery.

This is a collaborative project. Students should expect exposure to several different areas and will be able to develop in-depth expertise in at least two areas. Areas to be covered in the collaborative effort include biomaterials/nanomaterial design and fabrication, cell culture (specifically neurons), gene transfer, viral cultures, advanced microscopy, and animal models. The student will join the laboratories of Prof. Boutopoulos and Prof. Griffith at the Maisonneuve-Rosemont Hospital Research Center (CR-HMR) and the laboratory of Prof. Talbot at UdeM.

Date d'affichage

Juillet 2019

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Stage de doctorat – Coordination de la traduction de l’ARN et du métabolisme dans la résistance aux thérapies ciblées dans le cancer

Poste

  • Temps complet

Service

Direction de la recherche

Sommaire du poste

The research project aims to decipher the cross-talk between gene expression (mRNA translation) and metabolic reprogramming in cancer, and in adaptation to stress, by exploiting a combination of systems biology approaches (i.e. metabolomics, transcriptomics, and translatomics [transcriptome-wide collection of actively translated mRNAs]), combined with rigorous validation using standard molecular and cellular biology techniques.

More particularly, this project aims to dissect the mechanisms underpinning the anti-cancer action of translational inhibitors (against eIF4A and eIF4G) in the context of kinase inhibitor resistance, with the long-term goal of improving kinase inhibitor efficacy in the clinic.

Date d'affichage

Novembre 2019

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Maîtrise

Stage de maîtrise en division asymétrie et biophotonique

Poste

  • Temps complet

Service

Direction de la recherche

Sommaire du poste

We are looking for a motivated M.Sc. or Ph. D. student with background in molecular biology,
biomedical sciences or biomedical engineering interested to work on asymmetric division.
We recently developed a technology to labelling the membrane of live cell, a method termed Cell
Labeling via Photobleaching (CLaP). It allows arbitrary tagging of individual cells among a
heterogeneous population within a microscopy field. CLaP consists of crosslinking biotin to the
plasma membrane of chosen cells with the lasers of a confocal microscope, followed by use of
fluorescent streptavidin conjugates to reveal the tagged cells. In this manner, the same
instrument used for imaging can be adapted to label particular cells based exclusively on any
visible trait that distinguishes them from the ensemble. The mark is stable, non-toxic, retained in
cells for several days, and does not produce detectable alterations in cell morphology, viability,
or proliferative capacity. Moreover, genome-wide transcriptomic profiling demonstrated no
major changes in gene expression associated with the procedure. We aim to apply this method
to study genetic mechanism governing asymmetric division.

Date d'affichage

Mai 2019

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Stage de maîtrise en OCT et biophotonique

Poste

  • Temps complet

Service

Direction de la recherche

Sommaire du poste

During radiotherapy, ionizing radiation (IR) efficiently kills cancer cells by directly inducing highlygenotoxic DNA double strand breaks (DSB). The efficiencies of DSB are critical determinants in the response to cancer radiotherapy; indeed substantial evidence indicates that enhanced DSBR capacity in individual patients is a major determinant in tumour radioresistance. Moreover, (i) the considerable number of patients displaying severe radiosensitivity, who suffer from extreme IR-induced destruction of healthy tissue, and (ii) the occurrence of radiotherapy-induced secondary cancers, are both presumably associated with reduced DSBR capacity. In view of the above, there is a pressing need to better understand the fundamental mechanisms of DSBR, towards improving the clinical management of patients undergoing radiotherapy. Following exposure of cells to IR, multiple DNA repair proteins are rapidly recruited to DSB sites, forming nuclear foci which can only be monitored visually by fluorescence microscopy. Importantly, abnormal persistence (slow resolution) of foci is a well-established indicator of defective DSBR in general. Isolation and subsequent characterization of single cells based on their ability to resolve IRinduced nuclear foci has never been accomplished. To address this, we recently developed a method termed Single-Cell Magneto-Optical Capture (scMOCa) that allows, for the first time, arbitrary tagging of individual cells among a heterogeneous population within a microscopy field and their subsequent isolation and clonal expansion. By targeting individual live cells from within a heterogeneous population exhibiting differential capacity to resolve IR-induced DNA repair foci, we will set the stage for genome-wide profiling and functional analyses on the resulting clonallyderived cell populations.

Date d'affichage

Mai 2019

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Stage de maîtrise en réparation double-brin et biophotonique

Poste

  • Temps complet

Service

Direction de la recherche

Sommaire du poste

We are looking for a motivated M.Sc. or Ph. D. student with background in molecular biology,
biomedical sciences or biomedical engineering interested to work on asymmetric division.
We recently developed a technology to labelling the membrane of live cell, a method termed Cell
Labeling via Photobleaching (CLaP). It allows arbitrary tagging of individual cells among a
heterogeneous population within a microscopy field. CLaP consists of crosslinking biotin to the
plasma membrane of chosen cells with the lasers of a confocal microscope, followed by use of
fluorescent streptavidin conjugates to reveal the tagged cells. In this manner, the same
instrument used for imaging can be adapted to label particular cells based exclusively on any
visible trait that distinguishes them from the ensemble. The mark is stable, non-toxic, retained in
cells for several days, and does not produce detectable alterations in cell morphology, viability,
or proliferative capacity. Moreover, genome-wide transcriptomic profiling demonstrated no
major changes in gene expression associated with the procedure. We aim to apply this method
to study genetic mechanism governing asymmetric division.

Date d'affichage

Mai 2019

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Stage de maîtrise : voies de signalisation des cellules T et immunothérapie du cancer

Poste

  • Temps complet

Service

Direction de la recherche

Sommaire du poste

Nous cherchons à recruter étudiant diplômé à étudier pour une M.Sc. ou doctorat dans notre groupe d'immunologie dirigé par le Dr Christopher Rudd du CR de l’Hôpital Maisonneuve- Rosemont, un centre de recherche affilié à l'Université de Montréal. Le projet impliquera d'étudier les voies de signalisation des cellules T influençant les réponses des cellules T au cancer et à l'infection. Les projets comprennent une analyse de la fonction de différents co-récepteurs tels que CD28, PD-1, CTLA-4 dans la modulation de la fonction des cellules T et de l'immunité anti-tumorale. Un accent particulier est mis sur la nature des événements de signalisation des cellules T qui conduisent à une meilleure immunothérapie. Notre laboratoire fait partie d'un groupe solide de chercheurs collaborateurs ayant une expertise dans la biologie des lymphocytes T et du cancer, oeuvrant au sein d’un centre de recherche interdisciplinaire. Nous utilisons diverses techniques de biologie cellulaire et moléculaire dont la microscopie multi-photons sur des modèles murins afin d’étudier les maladies chez la souris et chez l’homme.

Date d'affichage

Mai 2019

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Stage de maîtrise : coordination de la traduction de l’ARN et du métabolisme dans la résistance aux thérapies ciblées dans le cancer

Poste

  • Temps complet

Service 

Direction de la recherche 

Sommaire du poste

The research project aims to decipher the cross-talk between gene expression (mRNA translation) and metabolic reprogramming in cancer, and in adaptation to stress, by exploiting a combination of systems biology approaches (i.e. metabolomics, transcriptomics, and translatomics [transcriptome-wide collection of actively translated mRNAs]), combined with rigorous validation using standard molecular and cellular biology techniques.

More particularly, this project aims to dissect the mechanisms underpinning the anti-cancer action of translational inhibitors (against eIF4A and eIF4G) in the context of kinase inhibitor resistance, with the long-term goal of improving kinase inhibitor efficacy in the clinic.

Date d’affichage

Novembre 2019

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Candidature spontanée

Le Centre de recherche de l’Hôpital Maisonneuve-Rosemont est régulièrement à la recherche d’étudiants et de doctorants pour enrichir ses équipes de recherche. Si aucun des postes ou stages affichés ci-dessus ne vous correspond, consultez la liste de nos chercheurs et de leurs sujets de recherche. Identifiez l'équipe de recherche avec laquelle vous aimeriez travailler. Écrivez-leur directement. N'oubliez pas d'inclure à votre courriel les éléments suivants : 

  • votre CV
  • une lettre de présentation indiquant vos objectifs de recherche à long terme et vos principales réalisations.